一、猪传染性萎缩性鼻炎油佐剂二联灭活疫苗（论文文献综述）
李连任[1]（2015）在《冬季猪群咳嗽多 鉴别诊疗是关键》文中指出冬季气候寒冷多变,易诱发猪只发病。如果预防、消毒、隔离、保健等措施落实不到位,会给猪场带来较大的疫病威胁。在冬季呼吸道疾病比较易发,猪群健康水平会出现明显波动,生长育肥猪咳嗽增多,特别是上一年感染过高致病性蓝耳病和圆环病毒阳性率高的猪场,表现更为明显,将严重影响养殖场的经济效益。在冬季到来之际,结合猪病发生特点,做好猪呼吸道疾病的防治工作,能有效帮助猪场安全度过寒冬,使养猪户增收。
张学武[2]（2015）在《猪传染性萎缩性鼻炎的诊疗措施探讨》文中研究表明猪传染性萎缩性鼻炎是猪的一种慢性呼吸道传染病,它是由产毒多杀性巴氏杆菌或者支气管败血波氏杆菌感染所引起的。根据临床实验观察,猪传染性萎缩性鼻炎几乎不会引起猪的死亡,其发病的主要病症是生长发育缓慢、停滞,鼻炎、鼻甲骨变形。该病的发生会使得猪对其他病原菌的抵抗力下降,进而并发其他疾病,因此对猪传染性萎缩性鼻炎的诊疗措施进行研究是十分有意义的。本文分析了猪传染性萎缩性鼻炎的流行病学特点和主要危害,有针对性地提出了猪传染性萎缩性鼻炎的防治措施,以期为更好地发展养猪业提供有力借鉴。
徐良[3]（2013）在《猪传染性胸膜肺炎杆菌菌影装载猪源巴氏杆菌外膜蛋白H基因疫苗的免疫效果评价》文中研究说明由猪传染性胸膜肺炎杆菌（Actinobacillus pleuropneumoniae，App）引起的猪传染性胸膜肺炎（Porcine contagious pleuropneumonia，PCP）和多杀性巴氏杆菌（Pasteurellamultocide）引起的猪萎缩性鼻炎（Porcine infectious atrophic rhinitic，AR）以及猪肺疫（Swine plague）是猪场常见的呼吸道传染病，常呈混合感染。感染病猪呼吸道结构被破坏，容易受到其他呼吸道病原菌的感染，常给世界养猪业带来巨大的经济损失。因此，有必要开发一种联合疫苗对上述猪病进行预防。本研究利用A型猪源多杀性巴氏杆菌外膜蛋白H成功构建了pCDNA-ompH基因疫苗，并将其装载到猪胸膜肺炎杆菌菌影中，制备了胸膜肺炎杆菌菌影装载pCDNA-ompH基因的二联疫苗，再通过小鼠攻毒试验评估其免疫保护效果，为该疫苗的临床应用奠定了实验基础。试验中将小鼠分成四组，其中三组分别用App菌影、pCDNA-ompH基因疫苗、App菌影装载pCDNA-ompH基因二联疫苗进行免疫接种，最后一组作为对照。共进行三次免疫，每次间隔2周，免疫一周后断尾采血，利用间接ELISA法检测抗体效价；最后一次免疫后2周用最小致死量活菌攻毒，观察一周，对于攻毒期间死亡小鼠进行剖检，采集心、肝、脾、肺、肾进行病理组织分析；一周后统计活鼠数量，解剖并观察病理变化，取血样本用于抗体测定，取心、肝、脾、肺、肾脏器用于病理组织分析。试验结果显示：App攻毒开始后小鼠出现食欲下降、精神沉郁、被毛粗糙、呼吸困难等现象，攻毒后App菌影疫苗免疫组死亡1只、App菌影疫苗装载pCDNA-ompH基因疫苗免疫组无死亡、对照组全部死亡，App菌影和App菌影装载pCDNA-ompH基因二联疫苗对最小致死量App I型活菌攻毒的保护率分别为90%和100%；Pm攻毒组小鼠出现食欲下降、被毛凌乱、腹泻、呼吸困难、反应迟缓等现象，攻毒后pCDNA-ompH基因疫苗免疫组死亡3只，App菌影装载pCDNA-ompH基因二联疫苗免疫组无死亡，对照组全部死亡，pCDNA-ompH基因疫苗和App菌影装载pCDNA-ompH基因二联疫苗对最小致死量Pm D型活菌攻毒的保护率分别为70%和90%。血清型A型多杀性巴氏杆菌的外膜蛋白H构建的基因疫苗，可以对血清型D型多杀性巴氏杆菌的攻毒产生交叉保护效力。病理切片分析可见App攻毒对照组的肺脏和肝脏淤血严重，肺部有凝固性坏死，菌影疫苗组和二联疫苗组存活小鼠则无明显病变或病变较轻；Pm攻毒对照组肾脏可见淤血、坏死、水泡变性，肺脏肺间质增宽和大面积淤血出血以及炎性细胞浸润等病变，攻毒存活的小鼠肾脏有轻微出血现象，肺部有轻微的淤血，其余各器官均正常。对比免疫前后和攻毒后小鼠，App菌影装载pCDNA-ompH二联疫苗组小鼠抗体滴度略高于App菌影组和pCDNA-ompH基因疫苗组，二联疫苗免疫的保护效果高于单一疫苗的免疫。本研究说明菌影装载基因疫苗构建二联疫苗的方法可行，已经取得的实验数据，可为进一步对猪传染性胸膜肺炎、猪萎缩性鼻炎以及猪肺疫的免疫保护奠定实验基础。
张洁[4]（2013）在《猪萎缩性鼻炎基因重组疫苗的比较研究》文中进行了进一步梳理猪传染性萎缩性鼻炎（Swine infectious atrophic rhinitis, AR）是一种猪的主要呼吸道传染病,主要由D型产毒素多杀性巴氏杆菌（Toxigenic Pasteurella multocida, T+Pm）和支气管败血波氏杆菌（Bordetella bronchiseptica, Bb）单独或共同感染引起,可造成猪的慢性鼻炎、鼻甲骨萎缩甚至消失,降低猪只生产性能,严重者甚至死亡,给养殖业造成了严重的经济损失。Bb的丝状血凝素FHA和百日咳杆菌粘附素PRN被认为是该菌重要的粘附因子和抗原成分；而T+Pm toxA基因编码的皮肤坏死毒素（DNT）是其主要致病毒力因子,研究表明ToxA基因C端和N端编码的氨基酸结构分别是DNT的催化位点和粘附位点,两者都具有良好的免疫原性。本实验室分别以减毒沙门氏菌和减毒波氏杆菌为载体,已构建了表达支气管败血波氏杆菌FHA和PRN融合基因的重组沙门氏菌C501（PYA-F1P2）.表达多杀性巴氏杆菌toxA基因的重组沙门氏菌C501（PYA-toxA）、分别表达多杀性巴氏杆菌toxA基因C端和N端的重组支气管败血波氏杆菌QH0814AaroA/toxAC和QH0814△aroA/toxAN。本研究将上述4种猪萎缩性鼻炎基因重组菌株作为候选疫苗,通过免疫断奶仔猪,比较不同基因重组菌株及不同免疫途径所产生的免疫应答,综合评价基因工程疫苗的免疫效果,期望筛选出一种安全、有效的基因重组疫苗,为猪萎缩性鼻炎的防控及净化提供方案和数据支撑。主要研究内容如下：1.4种基因重组疫苗菌株冻干工艺的优化分别以终浓度为10%、12.5%或15%的脱脂牛奶和5%的蔗糖的三种溶液作为基因重组疫苗的冻干保护剂,并在-40℃下预冻3h-5h后对疫苗进行冻干,利用平板计数法对冻干前后的活菌量进行计数,比较同一批次的菌株在不同浓度脱脂牛奶的冻干保护剂条件下的存活率,和同一批次菌株在同一浓度冻干保护剂下的不同预冻时间的存活率,结果表明终浓度为12.5%脱脂牛奶、5%蔗糖的溶液作为冻干保护剂,疫苗菌株的存活率最高,达到84.3%以上,最高活菌量达到5.22×1010CFU/ml。2.基因重组疫苗的安全性将4种基因重组菌株分为C501（PYA-F1P2）和C501（PYA-toxA）联合组,QH0814AaroA/toxAC组和QH0814△aroA/toxAN组3组候选疫苗,以合适免疫剂量接种28日龄仔猪,接种后7d内测量受试猪的体温,观察食欲、精神状况等,计算仔猪接种后30d的平均日增重,结果显示：受试猪健康状况良好,无明显不良反应,30d的平均日增重与对照组相比差异不明显,因此候选疫苗对仔猪具有良好的安全性；候选疫苗分别按滴鼻和肌肉注射的免疫方式接种仔猪,每天采集猪鼻腔拭子和圈舍内的水样、粪便,并将样本处理后进行PCR扩增,鉴定重组菌株的目的基因,结果显示：滴鼻免疫组的鼻拭子在接种第7天便检测不到基因重组菌株,而肌肉注射组的鼻拭子以及各组所在环境中的水样和粪便中始终未检到基因重组菌株,说明这4种疫苗菌株接种仔猪后只能在鼻腔中短期定殖,并且不会向周围环境中释放。3.基因重组疫苗最佳免疫剂量及其免疫方式的确定分别将3组候选疫苗稀释成不同梯度的免疫剂量,各组均以滴鼻和肌肉注射两种免疫方式免疫28日龄仔猪,分别在免疫后第7d、14d、21d和28d采集鼻拭子及血样,用ELISA方法检测T+Pm和Bb抗体水平,在免疫后7d内测量仔猪体温,观察仔猪的精神和采食情况,结果表明,疫苗免疫后均无不良反应,C501（PYA-F1P2）和C501（PYA-toxA）联合组的最佳免疫剂量为肌肉注射免疫5×109CFU/头；QH0814△aroA/toxAC和QH0814AaroA/toxAN滴鼻免疫的最佳免疫剂量均为6×109CFU/头,而肌肉注射免疫的最佳免疫剂量均为3×109CFU/头。4.基因重组疫苗对仔猪的免疫效力试验将4种重组疫苗以最佳免疫剂量接种28日龄仔猪,首免2周后加强免疫一次,分别在首免前、首免后14d、28d采集鼻拭子及血样,检测鼻腔粘液及血清中T+pm和Bb的IgA、IgG抗体水平。结果显示：基因重组疫苗能诱使仔猪产生针对T+Pm和Bb较高的抗体水平,而对照组的抗体水平则无升高。5.不同基因重组疫苗间以及与同类疫苗的对比试验将4种重组疫苗按照最佳免疫剂量接种28日龄仔猪,同时以进口商品化疫苗和自制二价细菌灭活苗为对照,免疫后测量各试验组仔猪体温、体重,观察并记录采食量等生产指标,计算仔猪免疫后平均日增重、料肉比,结果显示：除二价细菌灭活苗组的仔猪免疫后24h内有体温略微升高,采食量下降外,其他接种猪健康状况一直保持良好,候选疫苗组仔猪的鼻腔及血清中T+pm和Bb抗体水平均略低于进口疫苗组和二价全菌灭活苗组。仔猪的平均日增重差异不显着。与非免疫对照组相比,料肉比及药物使用量均有所降低。QH0814AaroA/toxAN与QH0814△aroA/toxAN联合免疫组和单独免疫组之间无明显的差异,但略高于C501（PYA-F1P2）和C501（PYA-toxA）联合免疫组,由此表明基因工程疫苗的免疫效果与其它疫苗组无较大差异,且具有一定的临床效果。
王纯斌[5]（2013）在《规模猪场呼吸综合症的临床诊治》文中认为规模猪场呼吸综合症是指规模猪场的发病猪在临床上表现为以咳嗽、喘气、呼吸困难、体温升高或正常,生长受阻等一系列临床症状的一类疾病。该类疾病多发于成规模的养猪场,其病因常因患畜感染了猪蓝耳病、猪伪狂犬病、猪喘气病、猪传染性胸膜肺炎、猪传染性萎缩性鼻炎、猪链球菌病、猪巴氏杆菌病、猪流行性感冒等病原微生物所致;近年
姜平[6]（2013）在《猪常用疫苗基本特性及使用方法》文中进行了进一步梳理（一）猪瘟疫苗免疫接种是预防和控制猪瘟的主要手段,目前我国瘟猪疫苗种毒均为猪瘟兔化弱毒,疫苗有组织苗和细胞苗2种类型。组织苗主要是利用猪瘟兔化弱毒接种3～5日龄乳兔,接种36小时后取乳兔的肝、脾及肌肉组织制成的疫苗。细胞苗是猪瘟兔化弱毒经犊牛睾丸细胞或ST细胞培养制成的疫苗,犊牛睾丸细胞有可能携带牛病毒性腹泻粘膜病病毒。生
余长贵[7]（2012）在《养猪场呼吸系统综合症的诊治》文中认为猪呼吸综合症以咳嗽、喘气、呼吸困难、体温升高或正常,但生长受阻等为主要临床症状的一类疾病。该类疾病多发于规模化养猪场,其病因可能是患猪感染了猪蓝耳病、猪伪狂犬病、猪喘气病、猪传染性胸膜肺炎、猪传染性萎缩性鼻炎、猪链球菌病、猪巴氏杆菌病、猪流行性感冒等。近年来,由于
杨旭夫,彭凌,朱必凤[8]（2010）在《猪传染性萎缩性鼻炎的危害与防控》文中研究指明猪传染性萎缩性鼻炎是由支气管败血波氏杆菌原发感染和或产毒素的多杀性巴氏杆菌参与感染引起猪的慢性呼吸道传染病。该病以鼻炎、鼻甲骨萎缩、生长迟滞及不同程度鼻部变形为特征。单纯的猪传染性萎缩性鼻炎死亡率很低,几乎不会引起死亡,主要危害是发生严重的生长迟滞,患猪及感染猪群健康状
罗洪钦[9]（2010）在《猪喘气综合症的诊治》文中认为前言:猪喘气综合症是指猪发病后,表现为以咳嗽、喘气、呼吸困难、体温升高或正常,生长受阻等为主要临床症状的一类疾病。该类疾病多发于规模化养猪场,其病因常因患畜感染了猪蓝耳病、猪伪狂犬病、猪支原体肺炎、猪传染性胸膜肺炎、猪传染性萎缩性鼻炎、猪链球菌病、猪巴氏杆菌病、猪流行性感冒等病原微生物所致;近年来,由于集约化养猪生产模式增多,猪喘气综合症疾病在养猪生产中已成为常见疾病,且发病率越来越高,给养猪生产造成了巨大损失。但在兽医临床诊治中,由于该类疾病存在症状近似的特点,以致临床确诊较困难等诸多因素的影响,致使猪群发病后,给养殖户和兽医临床诊治带来了一定的难度。
罗洪兰[10]（2010）在《猪咳喘综合症的临床诊断及防治技术浅探》文中研究指明前言:猪咳喘综合症是指猪发病后,表现为以咳嗽、喘气、呼吸困难、体温升高或正常,生长受阻等为主要临床症状的一类疾病。该类疾病多发于规模化养猪场,其病因常因患畜感染了猪蓝耳病、猪伪狂犬病、猪喘气病、猪传染性胸膜肺炎、猪传染性萎缩性鼻炎、猪链球菌病、猪巴氏杆菌病、猪流行性感冒等病原微生物所致;近年来,由于集约化养猪生产模式增多,猪咳喘综合症疾病在养猪生产中已成为
二、猪传染性萎缩性鼻炎油佐剂二联灭活疫苗（论文开题报告）
（1）论文研究背景及目的
此处内容要求：
首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景，再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题，并提出你的论文准备的观点或解决方法。
写法范例：
本文主要提出一款精简64位RISC处理器存储管理单元结构并详细分析其设计过程。在该MMU结构中,TLB采用叁个分离的TLB,TLB采用基于内容查找的相联存储器并行查找,支持粗粒度为64KB和细粒度为4KB两种页面大小,采用多级分层页表结构映射地址空间,并详细论述了四级页表转换过程,TLB结构组织等。该MMU结构将作为该处理器存储系统实现的一个重要组成部分。
（2）本文研究方法
调查法：该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。
观察法：用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。
实验法：通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。
文献研究法：通过调查文献来获得资料，从而全面的、正确的了解掌握研究方法。
实证研究法：依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。
定性分析法：对研究对象进行“质”的方面的研究，这个方法需要计算的数据较少。
定量分析法：通过具体的数字，使人们对研究对象的认识进一步精确化。
跨学科研究法：运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。
功能分析法：这是社会科学用来分析社会现象的一种方法，从某一功能出发研究多个方面的影响。
模拟法：通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。
三、猪传染性萎缩性鼻炎油佐剂二联灭活疫苗（论文提纲范文）
（1）冬季猪群咳嗽多 鉴别诊疗是关键（论文提纲范文）
| 1 猪瘟、猪丹毒、猪肺疫 |
| 1.1 病因不同 |
| 1.2 流行情况不同 |
| 1.3 临床症状不同 |
| 1.4 病理变化不同 |
| 1.5 对青霉素、磺胺类药物的敏感性不一样 |
| 2 猪传染性胸膜肺炎与喘气病 |
| 2.1 相似点 |
| 2.2 病原、临床症状和病理变化的区别 |
| 2.3 治疗措施的区别 |
| 3 传染性胸膜肺炎与猪肺疫、猪支原体肺炎、猪肺炎、猪支气管炎 |
| 3.1 相似点 |
| 3.2 主要不同点 |
| 4 猪鼻炎与猪感冒 |
| 4.1 发病情况不同 |
| 4.2 临床症状不同 |
| 4.3 防治措施不同 |
| 5 猪流感与猪感冒 |
| 5.1 发病情况不同 |
| 5.2 防治措施基本相同 |
| 6 猪鼻炎与猪流感、猪传染性萎缩性鼻炎 |
| 6.1 相似点和不同点 |
| 6.2 防治措施 |
（2）猪传染性萎缩性鼻炎的诊疗措施探讨（论文提纲范文）
| 1 猪传染性萎缩性鼻炎的特点及危害 |
| 1.1 猪传染性萎缩性鼻炎的流行病学特点 |
| 1.2 猪传染性萎缩性鼻炎的危害 |
| 2 猪传染性萎缩性鼻炎的诊断 |
| 3 猪传染性萎缩性鼻炎的防治措施 |
| 3.1 做好清洁与消毒 |
| 3.2 药物防治 |
| 3.3 免疫接种 |
| 3.3.1 对妊振的母猪免疫接种 |
| 3.3.2 对刚出生的仔猪免疫接种 |
| 3.3.3 对母猪及仔猪结合免疫接种 |
| 4 结语 |
（3）猪传染性胸膜肺炎杆菌菌影装载猪源巴氏杆菌外膜蛋白H基因疫苗的免疫效果评价（论文提纲范文）
| Contents |
| 摘要 |
| Abstract |
| 第一章 引言 |
| 1 前言 |
| 2 研究背景 |
| 2.1 猪传染性胸膜肺炎 |
| 2.1.1 临床特征 |
| 2.1.2 流行病学 |
| 2.1.3 病原学 |
| 2.1.4 致病因子 |
| 2.1.5 猪胸膜肺炎检测方法 |
| 2.1.6 猪传染性胸膜肺炎疫苗 |
| 2.2 猪传染性萎缩性鼻炎 |
| 2.2.1 病理变化 |
| 2.2.2 流行病学 |
| 2.2.3 病原学 |
| 2.2.4 致病因子 |
| 2.2.5 检测方法 |
| 2.2.6 猪萎缩性鼻炎的疫苗 |
| 2.3 猪肺疫及其疫苗 |
| 3 目的与意义 |
| 第二章 猪传染性胸膜肺炎杆菌菌影的鉴定以及猪源多杀性巴氏杆菌基因疫苗的制备 |
| 1 材料和方法 |
| 1.1 试验材料 |
| 1.1.1 菌株和质粒 |
| 1.1.2 主要培养基及其配制 |
| 1.1.3 主要实验仪器 |
| 1.2 方法 |
| 1.2.1 App 菌影菌株的鉴定 |
| 1.2.2 Pm ompH 基因疫苗的制备 |
| 2 结果 |
| 2.1 App 菌影菌株的 PCR 鉴定 |
| 2.2 pCDNA-ompH 的制备 |
| 2.2.1 ompH 的克隆 |
| 2.2.2 pMD-ompH 克隆载体的构建 |
| 2.2.3 ompH 的测序结果 |
| 2.2.4 pCDNA-ompH 的构建 |
| 2.2.5 pCDNA-ompH 的纯化 |
| 3 讨论 |
| 4 小结 |
| 第三章 猪传染性胸膜肺炎杆菌菌影装载猪多杀性巴氏杆菌基因二联疫苗的免疫效果评价 |
| 1 材料与方法 |
| 1.1 试验材料 |
| 1.1.1 主要培养基及其配制 |
| 1.1.2 其它缓冲液及试剂 |
| 1.1.3 细菌菌株 |
| 1.1.4 试验动物 |
| 1.1.5 仪器和耗材 |
| 1.2 方法 |
| 1.2.1 疫苗的无菌检验 |
| 1.2.2 分光光度值与两种细菌浓度关系试验 |
| 1.2.3 App I 型细菌 LD50和 Pm D 型细菌 LD50的确定 |
| 1.2.4 最佳免疫剂量的确定 |
| 1.2.5 疫苗的安全性实验 |
| 1.2.6 间接 ELISA 法检测 App 抗体 |
| 1.2.7 间接 ELISA 法检测 Pm 抗体 |
| 1.2.8 小鼠疫苗试验分组 |
| 1.2.9 免疫程序 |
| 1.2.10 石蜡病理切片的制作 |
| 1.2.11 免疫保护分析 |
| 2 结果 |
| 2.1 疫苗的无菌检验 |
| 2.2 分光光度值与细菌计数试验 |
| 2.3 App I 型和 Pm D 型对小鼠 LD50的测定 |
| 2.4 间接 ELISA 法检测抗体效价 |
| 2.4.1 包被浓度和血清的稀释度的确定 |
| 2.4.2 酶标二抗工作浓度的确定 |
| 2.5 免疫剂量的确定 |
| 2.6 疫苗的安全性检验 |
| 2.7 攻毒实验结果 |
| 2.8 免疫与攻毒后小鼠血清 App、Pm 抗体水平 |
| 2.9 剖检结果 |
| 2.10 动物回归试验 |
| 2.11 病理组织学变化 |
| 3 讨论 |
| 4 结论 |
| 参考文献 |
| 致谢 |
| 附录一 |
| 附录二 |
| 攻读学位期间发表的论文 |
（4）猪萎缩性鼻炎基因重组疫苗的比较研究（论文提纲范文）
| 摘要 |
| Abstract |
| 缩略词表(Abbreviation) |
| 1 文献综述 |
| 1.1 猪萎缩性鼻炎 |
| 1.1.1 病原学 |
| 1.1.2 流行病学 |
| 1.1.3 综合防控 |
| 1.2 产毒素多杀性巴氏杆菌主要毒力因子的研究进展 |
| 1.2.1 PMT毒素的特性研究 |
| 1.2.2 PMT毒素的免疫原性片段研究 |
| 1.3 支气管败血波氏杆菌主要毒力因子研究进展 |
| 1.3.1 毒力因子的特性研究 |
| 1.3.2 Bb免疫原性片段研究 |
| 1.4 猪萎缩性鼻炎疫苗研究进展 |
| 1.4.1 灭活苗 |
| 1.4.2 弱毒苗、亚单位疫苗与基因工程苗 |
| 2 研究目的与意义 |
| 3 材料与方法 |
| 3.1 材料 |
| 3.1.1 菌株 |
| 3.1.2 试验动物 |
| 3.1.3 酶和试剂 |
| 3.1.4 主要培养基及其配制 |
| 3.1.5 缓冲液及试剂配制 |
| 3.1.6 引物 |
| 3.2 方法 |
| 3.2.1 疫苗的制备 |
| 3.2.2 抗体间接ELISA检测方法的建立 |
| 3.2.3 仔猪Bb和T~+Pm母源抗体消长规律的测定 |
| 3.2.4 重组疫苗的安全性测定 |
| 3.2.5 重组疫苗菌株最佳免疫剂量的测定 |
| 3.2.6 重组疫苗间及与其它疫苗的免疫效果对比 |
| 4 结果与分析 |
| 4.1 疫苗的制备 |
| 4.1.1 重组疫苗菌株的鉴定 |
| 4.1.2 重组疫苗冻干条件的优化 |
| 4.1.3 疫苗的制备 |
| 4.2 T~+Pm、Bb抗体间接ELISA检测方法的建立 |
| 4.3 试验猪场仔猪免疫方案和母源抗体消长规律研究 |
| 4.4 重组疫苗对猪的安全性 |
| 4.4.1 重组疫苗对仔猪的安全性 |
| 4.4.2 重组疫苗对环境的安全性 |
| 4.5 重组疫苗对仔猪的最佳免疫剂量 |
| 4.5.1 断奶仔猪的抗体水平检测结果 |
| 4.5.2 免疫猪只健康状况及体温监测 |
| 4.6 重组疫苗间及与其它疫苗的效果对比试验 |
| 4.6.1 不同疫苗对仔猪的免疫效力 |
| 4.6.2 仔猪免疫后观察情况 |
| 4.6.3 仔猪生长情况 |
| 5 讨论 |
| 6 结论 |
| 参考文献 |
| 附录 |
| 致谢 |
（5）规模猪场呼吸综合症的临床诊治（论文提纲范文）
| 1 猪蓝耳病 |
| 1.1 临床诊断要点 |
| 1.2 死尸剖检及病料送检 |
| 1.3 防治措施 |
| 1.3.1 疫苗预防。 |
| 1.3.2 治疗。 |
| 2 猪伪狂犬病 |
| 2.1 临床诊断要点 |
| 2.2 死尸剖检及病料送检 |
| 2.3 防治措施 |
| 2.3.1 疫苗预防。 |
| 2.3.2 治疗。 |
| 3 猪气喘病 |
| 3.1 临床诊断要点 |
| 3.2 死尸剖检 |
| 3.3 防治措施 |
| 3.3.1 疫苗预防。 |
| 3.3.2 药物治疗。 |
| 4 猪传染性胸膜肺炎 |
| 4.1 临床诊断要点 |
| 4.2 剖检病变 |
| 4.3 防治措施 |
| 4.3.1 疫苗预防。 |
| 4.3.2 药物治疗。 |
| 5 猪传染性萎缩性鼻炎 |
| 5.1 临床诊断要点 |
| 5.2 剖检病变 |
| 5.3 防治措施 |
| 5.3.1 预防措施。 |
| 5.3.2 药物治疗。 |
| 6 猪链球菌病 |
| 6.1 临床诊断要点 |
| 6.2 死尸剖检及病料送检 |
| 6.3.1 疫苗预防。 |
| 6.3.2 药物治疗。 |
| 7 猪肺疫 |
| 7.1 临床诊断要点 |
| 7.2 死尸剖检及病料送检 |
| 7.3 防治措施 |
| 7.3.1 疫苗预防。 |
| 7.3.2 药物治疗。 |
| 8 猪流行性感冒 |
| 8.1 临床诊断要点 |
| 8.2 剖检病变 |
| 8.3 防治措施 |
| 8.3.1 预防措施。 |
| 8.3.2 药物治疗。 |
（7）养猪场呼吸系统综合症的诊治（论文提纲范文）
| 1 猪蓝耳病 |
| 1.1 临床诊断要点 |
| 1.2 病理剖检及病料送检 |
| 1.3 防治措施 |
| 1.3.1 疫苗预防 |
| 1.3.2 治疗 |
| 2 猪伪狂犬病 |
| 2.1 临床诊断要点 |
| 2.2 病理剖检及病料送检 |
| 2.3 防治措施 |
| 2.3.1 疫苗预防 |
| 2.3.2 治疗 |
| 3 猪气喘病 |
| 3.1 临床诊断要点 |
| 3.2 病理剖检 |
| 3.3 防治措施 |
| 3.3.1 疫苗预防 |
| 3.3.2 药物治疗 |
| 4 猪传染性胸膜肺炎 |
| 4.1 临床诊断要点 |
| 4.2 剖检病变 |
| 4.3 防治措施 |
| 4.3.1 疫苗预防 |
| 4.3.2 药物治疗 |
| 5 猪传染性萎缩性鼻炎 |
| 5.1 临床诊断要点 |
| 5.2 剖检病变 |
| 5.3 防治措施 |
| 5.3.1 预防措施 |
| 5.3.2 药物治疗 |
| 6 猪链球菌病 |
| 6.1 临床诊断要点 |
| 6.2 病理剖检及病料送检 |
| 6.3 防治 |
| 6.3.1 疫苗预防 |
| 6.3.2 药物治疗 |
| 7 猪肺疫 |
| 7.1 临床诊断要点 |
| 7.2 病理剖检及病料送检 |
| 7.3 防治 |
| 7.3.1 疫苗预防 |
| 7.3.2 药物治疗 |
| 8 猪流行性感冒 |
| 8.1 临床诊断要点 |
| 8.2 剖检病变 |
| 8.3 防治 |
| 8.3.1 预防措施 |
| 8.3.2 药物治疗 |
（8）猪传染性萎缩性鼻炎的危害与防控（论文提纲范文）
| 一、流行病学特点 |
| 二、危害 |
| 三、防控措施 |
| 四、药物防治 |
| 五、存在的问题 |
四、猪传染性萎缩性鼻炎油佐剂二联灭活疫苗（论文参考文献）
- [1]冬季猪群咳嗽多 鉴别诊疗是关键[J]. 李连任. 饲料博览, 2015(12)
- [2]猪传染性萎缩性鼻炎的诊疗措施探讨[J]. 张学武. 农业与技术, 2015(06)
- [3]猪传染性胸膜肺炎杆菌菌影装载猪源巴氏杆菌外膜蛋白H基因疫苗的免疫效果评价[D]. 徐良. 天津农学院, 2013(10)
- [4]猪萎缩性鼻炎基因重组疫苗的比较研究[D]. 张洁. 华中农业大学, 2013(02)
- [5]规模猪场呼吸综合症的临床诊治[J]. 王纯斌. 农业开发与装备, 2013(01)
- [6]猪常用疫苗基本特性及使用方法[J]. 姜平. 农村养殖技术, 2013(01)
- [7]养猪场呼吸系统综合症的诊治[J]. 余长贵. 中国畜牧兽医文摘, 2012(04)
- [8]猪传染性萎缩性鼻炎的危害与防控[J]. 杨旭夫,彭凌,朱必凤. 兽医导刊, 2010(11)
- [9]猪喘气综合症的诊治[A]. 罗洪钦. 第七届重庆市饲料工业发展战略研讨会暨第八届饲料工业协会会员大会论文集, 2010
- [10]猪咳喘综合症的临床诊断及防治技术浅探[J]. 罗洪兰. 畜牧市场, 2010(08)
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